

瓊脂糖-重組金黃色-葡萄球菌蛋白 A 親(qin) 和填料重組金黃色-葡萄球菌蛋白A 配基由大腸杆菌表達,不含動物來源,保留了野生型的5 個(ge) 結合域,因而ProANUPharose FF 的載量遠高於(yu) 野生型蛋白A 填料,對人IgG 的動態結合載量高於(yu) 40 mg/mL 。
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廠商性質:生產廠家
更新時間:2024-10-13
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瓊脂糖-重組金黃色-葡萄球菌蛋白 A 親(qin) 和填料
1 、產(chan) 品介紹
ProANUPharoseFF 是一款抗體(ti) 親(qin) 和填料,FF 為(wei) Fast Flow 的縮寫(xie) ,意味該填料可在高流速下工作。
重組金黃色-葡萄球菌蛋白A 配基由大腸杆菌表達,不含動物來源,保留了野生型的5 個(ge) 結合域,因而ProANUPharose FF 的載量遠高於(yu) 野生型蛋白A 填料,對人IgG 的動態結合載量高於(yu) 40 mg/mL 。ProANUPharoseFF 對人、小鼠、大鼠、兔、牛等等來源的多種類型和亞(ya) 型的抗體(ti) 有親(qin) 和作用,可從(cong) 腹水、血清、細胞培養(yang) 上清或細胞抽提物中分離和純化多種哺乳動物不同亞(ya) 型的抗體(ti) 或包含抗體(ti) Fc 片段的基因工程重組蛋白,可滿足不同規模的研究或生產(chan) 需求。
2 、產(chan) 品特點與(yu) 技術指標
產(chan) 品名稱 | 瓊脂糖-重組金黃色-葡萄球菌蛋白 A |
基質 | 4%交聯瓊脂糖 |
配基 | 重組金黃色-葡萄球菌蛋白 A , ≥6mg/mL |
粒徑範圍 a | 45~165 μm |
平均粒徑 | ~90 μm |
動態結合載量 b | ≥40 mg h-IgG/mL |
推薦工作流速 c | 60~300 cm/h |
最大流速與(yu) 壓力 d | >900 cm/h |
使用 pH | 3~10(推薦的工作 pH),3~12(短期穩定) |
化學穩定性 | 在以下溶液中穩定: 常用的水相緩衝(chong) 液 、 10~100 mmol/L NaOH 、6 mol/L 鹽酸胍、70%乙醇。 |
儲(chu) 存與(yu) 運輸 | 20%乙醇,2~8 ℃保存,2~30 ℃運輸 |
注:a90%體(ti) 積以上的微球在此粒徑範圍;bDBC10%測試條件為(wei) :10%流穿,6 min 停留時間;c 推薦流速是指該流速可滿足大部分柱高下2~6 min 停留時間的使用條件,並非隻能在該流速範圍內(nei) 工作;d 10 cm 柱高下的最大測試流速。
3、抗體(ti) 親(qin) 和層析簡介——重組金黃色-葡萄球菌蛋白 A
ProA NUPharose FF 的配基保留了野生型重組金黃色-葡萄球菌蛋白A 的E 、D 、A、B 、C 五個(ge) IgG 結合域。每個(ge) 結構域有58 個(ge) 氨基酸殘基,以反平行的個(ge) α 螺旋排列,所有結構域都能與(yu) IgG1、IgG2 和IgG4 的Fc 區結合,與(yu) IgG3 的親(qin) 和力則非常弱。蛋白A 與(yu) IgG 之間的特異性結合源自非共價(jia) 相互作用,包括在IgG 生理條件的溶液狀態下的疏水相互作用、極性相互作用和氫鍵。蛋白A 主要與(yu) IgG 的Fc 區結合,不過也有研究證據表明D 結合域可以與(yu) Fab 區結合。一般需要降低pH 將親(qin) 和作用破壞後進行洗脫,例如pH=3 的甘-氨酸、檸檬酸鹽和乙酸鹽等。
除了金黃色-葡萄球菌蛋白A,重組鏈球菌蛋白G 也可以與(yu) IgG 結合,下表為(wei) 蛋白A 和蛋白G 對不同哺乳動物不同亞(ya) 型抗體(ti) 的結合情況。
注:-表示不結合;+表示微弱結合;++表示中等結合;+++表示很強結合

4 、使用方法參考
4.1 色譜柱裝填
以下闡述與(yu) 層析係統連接時,填料的色譜柱裝填方法。
(1)所有需要用到的材料的溫度要與(yu) 色譜操作的溫度一樣,液體(ti) 最好做脫氣處理。
(2)填料用量計算:通過沉降定量填料體(ti) 積,需要的沉降填料體(ti) 積=柱體(ti) 積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體(ti) 積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定體(ti) 積。ProANUPharoseFF 的壓縮比為(wei) 1.15。為(wei) 使達到裝柱比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。
(3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻後量取相應體(ti) 積,抽濾除去液體(ti) ,並用約3 倍填料體(ti) 積的純化水洗滌,重複3 次,以除去保存液。
(4)裝柱填料懸液準備:將填料轉移到適當的容器中,加入適量的裝柱液,製成50~75 v%的裝柱填料懸液,使用前攪勻。
(5)裝填前準備:在清洗幹淨的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下 端的空氣,在柱內(nei) 保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調整柱子使其垂直於(yu) 地麵。
(6)裝填:將攪勻後的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(nei) (必要時使用裝柱器),為(wei) 避免引入氣泡,應使之沿層析柱內(nei) 壁自然流下。將所有填料加入後,用裝柱液將裝柱器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與(yu) 層析係統連接。
(7)壓柱:使柱內(nei) 填料自然沉降(或50~150 cm/h 的低流速下沉降),待填料沉降完-全後(填料與(yu) 液體(ti) 的界麵清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,並將柱頭下降至界麵處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3 MPa),繼續壓柱至界麵清晰穩定,標記界麵穩定時的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關(guan) 閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標記位置下方與(yu) 壓縮比對應的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成後,需用高流速平衡柱內(nei) 的填料。
裝柱條件 | ProANUPharose FF |
壓縮比 | 1.15 |
裝柱流速 | 300~600 cm/h |
4.2 柱效測定和評價(jia)
完成裝柱後、使用前可通過柱效測定和評價(jia) 可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用 理論塔板高度(HETP)和非對稱因子(As)來評價(jia) 。柱效測定可以采用丙酮或者NaCl 作為(wei) 樣品進行,按照下表配製樣品溶液和流動相。
樣品 | 1.0%丙酮 | 0.8~1.0 M NaCl |
樣品體(ti) 積 | 1.0%柱體(ti) 積 | 1.0%柱體(ti) 積 |
流動相 | 純水 | 0.4 M NaCl |
流速 | 30 cm/h | 30 cm/h |
檢測器 | UV-280 nm | 電導 |
根據 UV 或者電導率曲線計算理論塔板高度(HETP)、理論塔板數(N)和非對稱 因子(As),公式如下:
HETP=L/N
N=5.54(VR/Wh)2 As=a/b
其中:L 為(wei) 柱高;VR 為(wei) 保留體(ti) 積;Wh 為(wei) 半高峰寬;a 為(wei) 在 10%峰高處的第一個(ge) 半峰寬;b 為(wei) 在10%峰高處的第二個(ge) 半峰寬。
一般來說,HETP 的數值應小於(yu) 填料平均粒徑的三倍(即HETP/D50<3 ,D50 為(wei) 填料的平均粒徑),As 應在0.8~1.5 之間。
4.3 平衡與(yu) 上樣(Equilibration & Loading)
PB 緩衝(chong) 液(20 mM PB+150 mM NaCl,pH=7.0~7.4)是較為(wei) 常用和通用的緩衝(chong) 體(ti) 係。 初始的緩衝(chong) 液稱為(wei) 平衡緩衝(chong) 液,記為(wei) 緩衝(chong) 液 A。
在上樣前,需用緩衝(chong) 液A 在操作流速下平衡層析柱,該過程通常需要5~10 個(ge) 柱體(ti) 積的緩衝(chong) 液A,以電導、pH 等檢測信號參數不變且與(yu) 緩衝(chong) 液A 對應為(wei) 準。
上樣量可按“mg 目標蛋白/mL 填料"來設定,通常為(wei) DBC10% 的 50~80%,例如ProA NUPharose FF 產(chan) 品對人IgG 的DBC10%為(wei) ~40 mg/mL,上樣量可控製為(wei) 20~32 mg/mL 。在條件篩選階段,也可以降低上樣品,觀察結合、特異性和洗脫情況。上樣前需要對樣品進行離心(10000 g 以上)、過濾(0.22 或0.45 μm)處理,以免堵塞色譜柱。
上樣後需要 3~10 個(ge) 柱體(ti) 積的緩衝(chong) 液 A 再平衡層析柱。
4.5 在位清洗(CIP)
若發生柱壓升高,或有蛋白與(yu) 填料強烈結合無法洗脫,或有沉澱、變性蛋白時,需 要對填料進行在位清洗,可采用以下方法去除雜質,反向清洗效果更佳。
CIP 過程 | 目的 |
6 mol/L 鹽酸胍,2 CV;緩衝(chong) 液 A ,5 CV。 | 去除沉澱、變性蛋白 |
0.01~0.1 M NaOH ,接觸 10~15 min;緩衝(chong) 液 A ,5 CV。 | 去除沉澱、變性蛋白 |
0.1%非離子型表麵活性劑,2 CV;緩衝(chong) 液 A ,5 CV 。或 70%乙醇,3~5 CV;緩衝(chong) 液 A ,5 CV。 | 去除疏水性蛋白 |
4.6 填料保存
填料的初始保存液為(wei) 20%乙醇,使用過後可繼續用20%乙醇保存。保存溫度在 2~8℃ 為(wei) 宜,不可凍存。
