D-生物-素-瓊脂糖

D-生物-素-瓊脂糖

1 、產(chan) 品介紹

Biotin NUPharose FF 是一種將D-生物-素鍵合在NUPharose瓊脂糖基球上形成的親(qin) 和層析分離介質。該介質中的生物-素配基能高度特異性結合親(qin) 和素、鏈黴親(qin) 和素，親(qin) 和力非常高，可用於(yu) 親(qin) 和素、鏈黴親(qin) 和素及其偶聯物的固定化，固定化後的產(chan) 品可應用於(yu) 診斷檢測，蛋白純化等。也可直接用於(yu) 削弱親(qin) 和力的親(qin) 和素、鏈黴親(qin) 和素突變體(ti) 的純化。

2 、產(chan) 品特點與(yu) 技術指標

注：a90%體(ti) 積以上的微球在此粒徑範圍；bDBC10%測試條件為(wei) ：10%流穿，6 min 停留時間。

3 、生物-素填料親(qin) 和原理

Biotin NUPharose FF填料是在NUPharose 瓊脂糖凝膠微球骨架上修飾D-生物-素而成（圖1a）。D-生物-素與(yu) 鏈黴親(qin) 和素之間的親(qin) 和力非常高，其解離常數在10−14mol/L數量級，是自然界最-強的非共價(jia) 相互作用之一。

本產(chan) 品特異性結合鏈黴親(qin) 和素後非常穩定，隻有在苛刻的條件下，例如 2%SDS的變性條件才能將鏈黴親(qin) 和素解離。因此Biotin NUPharose FF適用於(yu) 親(qin) 和素、鏈黴親(qin) 和素及其偶聯物的固定化，固定化後的產(chan) 品可應用於(yu) 診斷檢測、蛋白純化等。

另外一方麵，一些鏈黴親(qin) 和素的突變體(ti) 與(yu) D-生物-素之間的親(qin) 和力大幅減弱，使得突變體(ti) 與(yu) D-生物-素的特異性結合是可逆的（圖1c），因而可以用Biotin NUPharose FF來純化鏈黴親(qin) 和素突變體(ti) （圖2）。

4 、使用方法參考 

4.1  色譜柱裝填以下闡述與(yu) 層析係統連接時，填料的色譜柱裝填方法。

（1）所有需要用到的材料的溫度要與(yu) 色譜操作的溫度一樣，液體(ti) 最好做脫氣處理。

（2）填料用量計算：通過沉降定量填料體(ti) 積，需要的沉降填料體(ti) 積=柱體(ti) 積×壓縮比（也稱壓縮因子）。沉降體(ti) 積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定體(ti) 積。Biotin NUPharose FF 的壓縮比為(wei) 1.15 。為(wei) 使達到裝柱比，可通過柱頭下壓的方法，也可以通過高流速壓柱。

（3）填料清洗：將填料懸液充分搖勻後量取相應體(ti) 積，抽濾除去液體(ti) ，並用約3倍填料體(ti) 積的純化水洗滌，重複3次，以除去保存液。

（4）裝柱填料懸液準備：將填料轉移到適當的容器中，加入適量的裝柱液，製成50~75 v%的裝柱填料懸液，使用前攪勻。

（5）裝填前準備：在清洗幹淨的層析柱下端加入裝柱液，以除去下墊片及層析柱下端的空氣，在柱內(nei) 保留少量的蒸餾水，擰緊下堵頭，調整柱子使其垂直於(yu) 地麵。

（6）裝填：將攪勻後的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(nei) （必要時使用裝柱器），為(wei) 避免引入氣泡，應使之沿層析柱內(nei) 壁自然流下。將所有填料加入後，用裝柱液將裝柱器加滿，擰緊裝柱器上蓋，將柱子與(yu) 層析係統連接。

（7）壓柱：使柱內(nei) 填料自然沉降（或50~150 cm/h的低流速下沉降），待填料沉 降完-全後（填料與(yu) 液體(ti) 的界麵清晰），去除裝柱器，裝上上柱頭，並將柱頭下降至界麵處；通過高流速（推薦流速見下表，注意柱壓不超過0.3 MPa），繼續壓柱至界麵清晰穩定，標記界麵穩定時的柱高。停泵，打開柱頭上的閥門/堵頭，關(guan) 閉柱底的閥門/堵頭，下壓柱頭至標記位置下方與(yu) 壓縮比對應的位置，旋緊柱頭，裝柱完成。裝柱完成後，需用高流速平衡柱內(nei) 的填料。

4.2  柱效測定和評價(jia)

完成裝柱後、使用前可通過柱效測定和評價(jia) 可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用理論塔板高度（HETP）和非對稱因子（As）來評價(jia) 。

4.3  推薦緩衝(chong) 液

推薦用以下緩衝(chong) 液結合鏈黴親(qin) 和素或者純化鏈黴親(qin) 和素突變體(ti) 。

結合緩衝(chong) 液：20 mM Tris-HCl，150 mM NaCl，1 mM EDTA，pH8.0

洗脫緩衝(chong) 液：結合緩衝(chong) 液+10~50 mM D-生物-素再生緩衝(chong) 液：0.1 M NaOH

4.4 樣品純化

（1）平衡：再用結合緩衝(chong) 液平衡5個(ge) 柱體(ti) 積，建議流速為(wei) 100~150 cm/h。

（2）上樣：將準備好的樣品上柱，建議流速為(wei) 20~ 00cm/h ，可根據實際結合情況選擇流速，能獲得較好的效果。上柱的樣品應盡量保持與(yu) 結合緩衝(chong) 液一致。通常可用透析、超濾、稀釋等方法處理樣品。並且上柱前應過 0.45μm 濾膜或高速離心去除 不溶物。

（3）再平衡：上樣後用結合緩衝(chong) 液平衡5~10個(ge) 柱體(ti) 積，或平衡至基線，洗去 雜質，推薦流速為(wei) 100~150 cm/h。

（4）洗脫：用洗脫緩衝(chong) 液洗6~10個(ge) 柱體(ti) 積，建議流速為(wei) 100~150 cm/h,根據需要置換緩衝(chong) 液。

（5）NaOH再生：洗脫目的蛋白後的柱子用純水清洗3-5個(ge) 柱體(ti) 積，並用0.1 M NaOH 再生 3-5 個(ge) 柱體(ti) 積，再用純水清洗至中性，用 20%乙醇保存柱子，或用結合緩衝(chong) 液平衡後進行下一次純化，建議流速為(wei) 100~150 cm/h。

4.5 填料保存

填料的初始保存液為(wei) 20%乙醇，使用過後可繼續用20%乙醇保存。保存溫度在2~8 ℃為(wei) 宜，不可凍存。