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大豆胰蛋-白酶抑製劑-瓊脂糖TI NUPharose FF是一種將大豆胰蛋-白酶抑製劑鍵合在瓊脂糖凝膠微球上形成的生物親(qin) 和層析分離介質。該產(chan) 品保留了瓊脂糖極-好的親(qin) 水性及大網架結構,與(yu) 生物活性大分子有很好的相容性,具有載量高,非特異性吸附少,流速快等特點,主要用於(yu) 胰蛋-白酶、糜蛋-白酶、凝血X因子等絲(si) -氨酸蛋白酶的提取和純化,也可以用於(yu) 腸-激酶的去除。
產品型號:
廠商性質:生產廠家
更新時間:2024-10-13
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大豆胰蛋-白酶抑製劑-瓊脂糖
1 、產(chan) 品介紹
TI NUPharose FF是一種將大豆胰蛋-白酶抑製劑(Soybean Trypsin Inhibitor,STI)鍵合在瓊脂糖凝膠微球上形成的生物親(qin) 和層析分離介質。該產(chan) 品保留了瓊脂糖極-好的親(qin) 水性及大網架結構,與(yu) 生物活性大分子有很好的相容性,具有載量高,非特異性吸附少,流速快等特點,主要用於(yu) 胰蛋-白酶、糜蛋-白酶、凝血X因子等絲(si) -氨酸蛋白酶的提取和純化,也可以用於(yu) 腸激酶的去除。
2 、產(chan) 品特點與(yu) 技術指標
產(chan) 品名稱 | 大豆胰蛋-白酶抑製劑-瓊脂糖 |
目錄編號 | NRPB10L 、NRPB10S(預裝柱) |
基質 | 4%交聯瓊脂糖 |
配基 | STI(大豆胰蛋-白酶抑製劑),~6mg/mL |
載量 | ~10 mg 胰蛋-白酶/mL |
粒徑範圍 a | 45~165 μm |
平均粒徑 | ~90 μm |
推薦工作流速 | 60~300 cm/h |
最大流速與(yu) 壓力 b | 900 cm/h ,0.3 MPa |
使用 pH | 3~9 |
化學穩定性 | 在溫和的水相緩衝(chong) 液穩定,避免強酸強堿,避免有機試劑。 |
儲(chu) 存與(yu) 運輸 | 2~8 ℃(儲(chu) 存),2~30 ℃(運輸) |
注:a90%體(ti) 積以上的微球在此粒徑範圍;b 10 cm 柱高下的最大測試流速。
3 、使用方法參考
3.1 色譜柱裝填
以下闡述與(yu) 層析係統連接時,填料的色譜柱裝填方法。
(1)所有需要用到的材料的溫度要與(yu) 色譜操作的溫度一樣,液體(ti) 最好做脫氣處理。
(2)填料用量計算:通過沉降定量填料體(ti) 積,需要的沉降填料體(ti) 積=柱體(ti) 積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體(ti) 積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定體(ti) 積。STI NUPharose FF的壓縮比為(wei) ~1.15。為(wei) 使達到裝柱比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。
(3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻後量取相應體(ti) 積,抽去液體(ti) ,並用約3倍填料體(ti) 積的純化水洗滌,重複3次,以除去保存液。
(4)裝柱填料懸液準備:將填料轉移到適當的容器中,加入適量的裝柱液,製成50~75 v%的裝柱填料懸液(原包裝中填料體(ti) 積分數為(wei) 67%),使用前攪勻。
(5)裝填前準備:在清洗幹淨的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下 端的空氣,在柱內(nei) 保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調整柱子使其垂直於(yu) 地麵。
(6)裝填:將攪勻後的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(nei) (必要時使用裝柱器),為(wei) 避免引入氣泡,應使之沿層析柱內(nei) 壁自然流下。將所有填料加入後,用裝柱液將裝柱 器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與(yu) 層析係統連接。
(7)壓柱:使柱內(nei) 填料自然沉降(或 50~150 cm/h 的低流速下沉降),待填料沉降完-全後(填料與(yu) 液體(ti) 的界麵清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,並將柱頭下降至界麵處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3MPa),繼續壓柱至界麵清晰穩定,標記界麵穩定時的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關(guan) 閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標記位置下方與(yu) 壓縮比對應的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成後,需用高流 速平衡柱內(nei) 的填料。
裝柱條件 | STI NUPharose FF |
壓縮比 | ~1.15 |
裝柱流速 | 600~900 cm/h,依賴於(yu) 色譜柱尺寸,以壓縮比和柱效 測試為(wei) 準 |
3.2 柱效測定和評價(jia)
完成裝柱後、使用前可通過柱效測定和評價(jia) 可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用理論塔板高度(HETP)和非對稱因子(As)來評價(jia) 。
3.3 平衡與(yu) 上樣
在上樣前,可用上樣緩衝(chong) 液(平衡緩衝(chong) 液)在操作流速下平衡層析柱,觀察檢測器的變化,直到電導、pH 等參數不變,一般需5~10個(ge) CV(柱體(ti) 積)。上樣量根據樣品的性質和層析介質的量進行選擇,可在預實驗中確定,例如靜態吸附實驗。
上樣前需通過透析或超濾將樣品溶劑置換為(wei) 上樣緩衝(chong) 液(平衡緩衝(chong) 液),然後澄清過濾(0.45、0.22μm)。
上樣緩衝(chong) 液pH 通常為(wei) 7.0~8.0,可參考使用如下上樣緩衝(chong) 液:50mM Tris-HCl,100~500 mM NaCl,pH8.0。
在去除腸激酶的應用中,目標蛋白在流穿中,腸激酶被結合在柱上。
3.4 淋洗
用 2-5 個(ge) 柱體(ti) 積的平衡緩衝(chong) 液衝(chong) 洗上樣後的層析柱,觀察檢測器的變化,直到電導、 pH 等參數不變,此時未結合的組分被清洗出去。
3.5 洗脫
親(qin) 和層析柱的洗脫可用恒定洗脫、梯度洗脫或者階躍洗脫。一般用酸性緩衝(chong) 液進行洗脫。推薦的洗脫緩衝(chong) 液為(wei) :100 mM Glycine-HCl,500mM NaCl,pH3.0。洗脫後的樣品應盡快調節至中性,比如加入1/10體(ti) 積的2M Tris-HCl (pH8.0)。
3.6 再生與(yu) 在位清洗(CIP)
可以用平衡緩衝(chong) 液和洗脫緩衝(chong) 液反複清洗,不耐受強酸、強堿、強有機溶劑的清洗。
3.7 填料保存
填料的初始保存液為(wei) 20%乙醇,使用過後可繼續用20%乙醇保存。保存溫度在2~8 ℃為(wei) 宜,不可凍存。
