信帆生物告訴大家：WB實驗內參的選擇

檢測一個(ge) 基因的表達產(chan) 物是否正確，或者比較表達產(chan) 物量的相對變化，方法是western blot。雖然，順利的時候Western Blot做起來很簡單，可不順的時候也很令人心煩――做不出結果啦、假陽性啦、結果出現多條帶啦、到底是一抗有問題還是二抗有問題啦……畢竟，作為(wei) 一種有活性的生物大分子，抗體(ti) 和抗原的反應畢竟不象1+1那麽(me) 明確，而用這種不確定的試劑來測定同樣知之甚少的表達產(chan) 物，確實是有一定的不確定性的。所以，嚴(yan) 謹的Western Blot實驗設計中要求有良好的參照體(ti) 係，對實驗結果分析是非常有用的。

我們(men) 知道，要用Western Blot比較不同條件下或者不同組織中，目的蛋白表達量的相對多少，前提條件是等量的細胞上樣，才有比較的基礎。特別表達量不高時，上樣量的差別就很可能影響結果的分析。艾美捷向您推薦使用內(nei) 參抗體(ti) 來檢測您的實驗係統，或者校準您的實驗結果。內(nei) 參即是內(nei) 部參照(Internal Control)，對於(yu) 哺乳動物細胞表達來說一般是指由管家基因編碼表達的蛋白(Housekeeping Proteins)，它們(men) 在各組織和細胞中的表達相對恒定，在檢測蛋白的表達水平變化時常用它來做參照物。在Western Blotting中使用內(nei) 參其實就是在WB過程中的另外用內(nei) 參對應的抗體(ti) 檢測內(nei) 參，這樣在檢測目的產(chan) 物的同時可以檢測內(nei) 參的表達，由於(yu) 內(nei) 參在各組織和細胞中的表達相對恒定，借助檢測每個(ge) 樣品內(nei) 參的量就可以用於(yu) 校正上樣誤差，這樣半定量的結果才更為(wei) 可信。此外使用內(nei) 參可以作為(wei) 空白對照，檢測蛋白轉膜情況是否*、整個(ge) Western Blot顯色或者發光體(ti) 係是否正常。

實驗結果分析其實很簡單：如果樣品蛋白量有限，隻夠進行一次電泳轉膜實驗時，分別檢測樣品的內(nei) 參量和目的蛋白量。將各樣品目的蛋白量分別除以其內(nei) 參含量，得到的數值即為(wei) 內(nei) 參校正後的各樣品中目的蛋白相對含量，再用此數值進行樣品間的比較和分析，得到目的蛋白含量在不同樣品間的實際變化結果。如果樣品量充分，可以先檢測內(nei) 參，觀測樣品間內(nei) 參顯色條帶是否一致，根據差異大小調整各樣品的上樣量重新進行Western Blotting實驗，至內(nei) 參量一致為(wei) 止;若內(nei) 參一致，即可進行不同樣品間目的蛋白表達變化分析。這樣雖然麻煩一點，但是可以保證結果更有說服力，更可信。畢竟我們(men) 的實驗是一種嚴(yan) 謹的工作。

常用的細胞總蛋白質內(nei) 參有GAPDH(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase)和細胞骨架蛋白beta-actin或beta-tubulin，這其中zui近的國外文獻報道中使用GAPDH內(nei) 參的較多。對於(yu) 一些植物的樣本，則需要特別的植物Actin蛋白作為(wei) 內(nei) 參;同樣的，如果提取的樣本是細胞核蛋白，那麽(me) PCNA或者組蛋白H3都是被經常使用的;而針對一些研究線粒體(ti) 的客戶，那麽(me) Cox IV則被較多的文獻引用作為(wei) 線粒體(ti) 總蛋白的內(nei) 部參考。