明膠酶譜分析試劑盒為什麽老出不了條帶，看過來！

明膠酶譜分析試劑盒為(wei) 什麽(me) 老出不了條帶，看過來！

很多老師反應在操作明膠酶譜試劑盒的時候，有時候很難出現漂亮的條帶，信帆生物為(wei) 您答疑解惑！

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1.樣本失活

2.電泳操作不對，配膠不均，有氣泡，溫度控製不當等。

3.孵育時間不夠。由於(yu) 某些樣本活性太低，孵育時間不夠，很難出現漂亮的條帶。

我們(men) 在明膠酶譜分析試劑盒時候的注意事項：

1.製備聚丙烯酰胺時應注意排除氣泡。

2.明膠酶譜的活性受鈣離子，鋅離子，和PH值等因素的影響，因此緩衝(chong) 液配製應嚴(yan) 格準確，盡量用超純水，孵育溫度也掌握好。

3.用大梳子

4.孵育液的PH在7.5-7.6，複性的TRITON時間長了會(hui) 有絮狀物，所以實驗時盡量使用新鮮配置的。

5.孵育的37度不要在CO2培養(yang) 箱中，因為(wei) 會(hui) 改變孵育液的PH值，在普通孵箱即可。

明膠酶譜分析試劑盒檢測步驟：

1 製備含MMP底物蛋白的SDS-PAGE凝膠：推薦分離膠濃度為(wei) 8%。按照標準程序製備SDS PAGE凝膠。將10 × substrate G 融化，並90 ºC 加熱5分鍾。分別在濃縮膠和分離膠中額外加入10 × substrate G 並使之稀釋10倍，混勻後加入過硫酸銨和TEMED，等待凝膠聚合。

2 待測樣品1:1 稀釋於(yu) 2 × SDS-PAGE non-reducing buffer (用完後可自行配製：4% SDS, 100 mM Tris-Cl  pH6.8, 20% glycerol, 0.02% bromophnol blue)，混合後直接上樣。切勿加熱變性，並且僅(jin) 使用不加還原劑的上樣緩衝(chong) 液。可通過預試驗確定加樣量，使用普通蛋白預染Marker 即可。陽性對照(可選步驟)：可取人、小鼠、大鼠或兔100μl 全血與(yu) 100μl 2 × SDS-PAGE nonreducing buffer 等體(ti) 積混合，取5-15μl 上樣。

3 低電流恒流電泳，每一塊小膠電流為(wei) 20 mA/gel。溴酚藍跑出凝膠前沿時結束電泳。

4 洗滌凝膠：取出凝膠，去除濃縮膠，放入容器內(nei) 。可先用適量蒸餾水衝(chong) 洗凝膠，然後加入10 ml 1× Buffer A(用蒸餾水稀釋)，室溫漂洗凝膠2 × 30 分鍾。中間換液。

5 孵育：倒掉Buffer A。加入10 ml 1× Buffer B(蒸餾水稀釋)，室溫或37ºC 孵育1~5 小時。陽性對照或者血中的MMP 通常37ºC 孵育1 小時即可顯示。如MMP 活性低，應延長孵育時間為(wei) 10小時或過夜。

6 顯色：倒掉Buffer B，加入SDS-PAGE凝膠蛋白質考馬斯亮藍染色液（操作步驟見後麵所附SDS-PAGE凝膠蛋白質考馬斯亮藍染色液說明書(shu) ）。凝膠的大部分區域被深染，在有MMP 條帶的位置不被染色而形成透亮區域。透明區域的位置和範圍指示MMP-2、MMP-9 的大小位置(酶譜)及活性。陽性對照將在66~72 (MMP-2)、92 (MMP-9)、130 (proMMP-9)、225 (proMMP-9) kDa位置出現透明條帶。

7 條帶掃描：將凝膠放在掃描儀(yi) 上掃描。雖然MMP條帶透明，但凝膠背景並非真正全黑。解決(jue) 辦法：可用非透射光掃描，或用軟件圖像處理程序調整背景顯示為(wei) 灰度顯示，並盡量設置為(wei) 黑色。MMP 條帶則為(wei) 白色，這種背景黑條帶白的格式是英文論文中zui常見的格式。

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​附上一張條帶圖：