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JC-1法檢測線粒體膜電位,以及檢測線粒體膜電位的操作步驟

更新時間:2018-05-22      瀏覽次數:15974

JC-1法檢測線粒體(ti) 膜電位,以及檢測線粒體(ti) 膜電位的操作步驟!

 

線粒體(ti) 膜電位檢測試劑盒(JC-1 法)(Mitochondrial membrane potential assay kit with JC-1)是一種以 JC-1 為(wei) 熒光探針,快速靈敏地檢測細胞、組織或純化的線粒體(ti) 膜電位變化的試劑盒,可以用於(yu) 早期的細胞凋亡檢測,CCCP 作為(wei) 誘導線粒體(ti) 膜電位下降的陽性對照。該試劑盒僅(jin) 用於(yu) 科研領域,不宜用於(yu) 研究診斷或其他用途。

 

產(chan) 品組成:

 

編號

50T

100T

Storage

名稱

 

 

 

試劑(A): JC-1 Stain(200×)

3×100μl

5×100μl

-20℃ 避光

 

 

 

 

試劑(B): JC-1 Buffer(5×)

40ml

80ml

4℃

 

 

 

 

試劑(C): CCCP(10mM)

10μl

20μl

-20℃

 

 

 

 

試劑(D): ddH2O

45ml

90ml

RT

使用說明書(shu)

 

1 份

 

 

 

 

 

 

操作步驟(僅(jin) 供參考)

1、配製 JC-1 染色工作液:

 

取適量 JC-1 Stain (200×),按照每 50μl JC-1 Stain (200×)加入 8ml ddH2O 的比例稀釋 JC-1,劇烈 Vortex 充分溶解並混勻 JC-1 Stain。然後再加入 2ml JC-1 Buffer(5×),

混勻後即為(wei) JC-1 染色工作液。6 孔板每孔所需 JC-1 染色工作液的量為(wei) 1ml,其它培養(yang) 器皿的 JC-1 染色工作液的用量以此類推;對於(yu) 細胞懸液每 0.5~1.0×106 細胞需 0.5ml JC-1 染色工作液。

 

2、設置陽性對照:

推薦 CCCP(10mM)按照 1:1000 的比例加入到細胞培養(yang) 液中,稀釋至 10μM,處理細胞20min。隨後按照下述方法裝載 JC-1,進行線粒體(ti) 膜電位的檢測。對於(yu) 大多數細胞,通常 10μM CCCP 處理 20min 後線粒體(ti) 的膜電位會(hui) *喪(sang) 失,JC-1 染色後觀察應呈綠色熒光;而正常的細胞經 JC-1 染色後應顯示紅色熒光。對於(yu) 特定的細胞,CCCP 的作用濃度和作用時間可能有所不同,需自行參考相關(guan) 文獻資料確定。

 

3、對於(yu) 懸浮細胞:

  • 取 1~6×105 細胞,重懸於 0.5ml 細胞培養液中,細胞培養液中可以含血清和酚紅。

 

  • 加入 0.5ml JC-1 染色工作液,顛倒數次混勻。細胞培養箱中 37℃孵育 20min。

 

  • 在孵育期間,按照每 1ml JC-1 Buffer(5×)加入 4ml 蒸餾水的比例,配製適量的 JC-1 Buffer(1×),並放置於冰浴。

 

  • 37℃孵育結束後, 4℃ 600g 離心 3~4min,沉澱細胞。棄上清,注意盡量不要吸除細胞。

 

  • 用 JC-1 Buffer(1×)洗滌 2 次:加入 1ml JC-1 Buffer(1×)重懸細胞,4℃ 600g 離心3~4min,沉澱細胞,棄上清。再加入 1ml JC-1 Buffer(1×)重懸細胞,4℃ 600g 離心

3~4min,沉澱細胞,棄上清。

 

  • 再用少量 JC-1 Buffer(1×)重懸後,用熒光顯微鏡或激光共聚焦顯微鏡觀察,也可以用熒光分光光度計檢測或流式細胞儀分析。

JC-1法檢測線粒體(ti) 膜電位,以及檢測線粒體(ti) 膜電位的操作步驟!

4、對於(yu) 貼壁細胞:

 

注意:對於(yu) 貼壁細胞,如果希望采用熒光分光光度計或流式細胞儀(yi) 檢測,應先收集細胞,重懸後參考懸浮細胞的檢測方法。

 

  • 吸除 6 孔板培養液,根據具體實驗如有必要可以用 PBS 或其它適當溶液洗滌細胞一次,加入 1ml 細胞培養液。細胞培養液中可以含有血清和酚紅。

 

  • 加入 1ml JC-1 染色工作液,充分混勻。細胞培養箱中 37℃孵育 20min。

 

  • 在孵育期間,按照每 1ml JC-1 Buffer(5×)加入 4ml 蒸餾水的比例,配製適量的 JC-1 Buffer(1×),並放置於冰浴。

 

  • 37℃孵育結束後,吸除上清,用 JC-1 Buffer(1×)洗滌 2 次。

 

  • 加入 2ml 細胞培養液,培養液中可以含有血清和酚紅。

 

  • 熒光顯微鏡或激光共聚焦顯微鏡下觀察。

 

5、對於(yu) 純化的線粒體(ti) :

 

  • 把配製好的 JC-1 染色工作液再用 JC-1 Buffer(1×)稀釋 5 倍。

 

  • 0.9ml JC-1 染色工作液中加入 0.1ml 總蛋白量為 10~100μg 純化的線粒體。

 

  • 用熒光分光光度計或熒光酶標儀檢測:混勻後直接用熒光分光光度計進行時間掃描,激發波長為 485nm,發射波長為 590nm。如果使用熒光酶標儀,激發波長不能設置為 485nm 時,可以在 475~520nm 範圍內設置激發波長。另外,也可以參考下麵步驟 6

 

 

中的波長設置進行熒光檢測。 d. 用熒光顯微鏡或激光共聚焦顯微鏡觀察:方法同下麵的步驟 6。

 

6、熒光觀測和結果分析:

 

檢測 JC-1 單體(ti) 時可以把激發光設置為(wei) 490nm,發射光設置為(wei) 530nm;檢測 JC-1 聚合物時,可以把激發光設置為(wei) 525nm,發射光設置為(wei) 590nm。注意:此處測定熒光時不必把激發光和發射光設置在zui大激發波長和zui大發射波長。如使用熒光顯微鏡觀察,檢測 JC-1 單體(ti) 時可以參考觀察其它綠色熒光時的設置,如觀察 GFP 或 FITC 時的設置;檢測 JC-1 聚合物時可以參考觀察其它紅色熒光,如碘化丙啶或 Cy3 時的設置。出現綠色熒光說明線粒體(ti) 膜電位下降,並且該細胞很可能處於(yu) 細胞凋亡早期。出現紅色熒光說明線粒體(ti) 膜電位比較正常,細胞的狀態也比較正常。

 

注意事項:

 

1、 JC-1 Stain(200×)應*溶解混勻後使用,但應避免反複凍融。必須先把 JC-1 用 ddH2O 充分溶解混勻後,才可加入 JC-1 Buffer(1×)。不可先配製 JC-1 Buffer(1×)再加入

 

JC-1 Stain(200×),否則導致 JC-1 很難充分溶解,嚴(yan) 重影響後續的檢測。

 

2、 對於(yu) 6 孔板中的樣品,本試劑盒共可以檢測 100 個(ge) 樣品;對於(yu) 12 孔中的樣品,本試劑盒共可以檢測 200 個(ge) 樣品。

 

3、 裝載完 JC-1 後用 JC-1 Buffer(1×)洗滌時,盡量使 JC-1 Buffer(1×)保持 4℃左右,此時的洗滌效果較好。

 

4、 JC-1 探針裝載完並洗滌後盡量在 30min 內(nei) 完成後續檢測,在檢測前需冰浴保存。

 

5、 勿把 JC-1 Buffer(5×)全部配製成 1×,因為(wei) 操作過程中需直接使用 JC-1 Buffer(5×)。6、 如 JC-1 Buffer(5×)中有沉澱,必須全部溶解後才能使用,為(wei) 促進溶解可以在 37℃加熱。7、 CCCP 為(wei) 線粒體(ti) 電子傳(chuan) 遞鏈抑製劑,有一定毒性,請注意小心防護。

 

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